31902 High-yield Cas9 sgRNA Synthesis and Purification Kit
产品概述
■ 产品描述
High-yield Cas9 sgRNA Synthesis and Purification Kit是基于T7 RNA聚合酶的体外RNA转录试剂盒,可高效进行Cas9 sgRNA的制备。使用本试剂盒时,仅需按照本试剂盒说明书设计并合成Target Sense Oligo,每次反应可获得50-150 μg的Cas9 sgRNA。
■ 产品组分
| Part A:体外转录试剂(-20℃保存) |
31902-01 (25 T) |
31902-02 (50 T) |
| ● 5 × TranscriptMax Reaction Buffer | 100 μL | 200 μL |
| ● NTP mix | 200 μL | 400 μL |
| ● TranscriptMax Enzyme Mix | 55 μL | 110 μL |
| ○ Nuclease-free Water | 1 mL | 1 mL |
| ● 2 × PCR Master Mix | 250 μL | 500 μL |
| ● Cas9 Antisense Oligo | 25 μL | 25 μL |
| ● Cas9 Control Target Sense Oligo a | 25 μL | 25 μL |
| ● 2 × DNase Ⅰ Buffer | 625 μL | 1250 μL |
| ● DNase Ⅰ | 100 μL | 200 μL |
| Part B:纯化磁珠(4℃保存) |
3620F-01 (25 T) |
3620F-01 (50 T) |
| ● Magnetic Beads b | 625 μL | 1250 μL |
a. Cas9 Control Target Sense Oligo是阳性对照,可与Cas9 Antisense Oligo退火延伸后,作为转录模板使用,用来测试体外转录体系的效率。在37℃孵育30 min条件下,对照转录反应体系生成的sgRNA产量≥50 μg,其产量在纯化后由NanoDrop测定。在变性条件下进行TBE-Urea gel电泳,可观察到sgRNA单条带大小约为100 nt。
b. 本产品中Part B组分(纯化磁珠,#3620F)与Part A组分保存条件不同,因此Part B组分需单独运输!
■ 保存条件
Part A组分-20℃储存;Part B组分2~8℃储存(磁珠严禁冷冻!)。
■ 需自备的实验物品
• PCR仪
• 无水乙醇
• 异丙醇
• 无核酸酶水
• 96 孔磁力架(推荐TOLOBIO 96孔磁力架,货号:#49002)
• 96 孔板或PCR 8联排管
• 移液器及吸头
■ Cas9 sgRNA转录引物设计
1.Cas9 sgRNA转录原理示意图
Cas9 sgRNA转录原理示意图如图1所示,试剂盒中已提供Cas9 Antisense Oligo,只需根据待测目标序列设计Target Sense Oligo即可。

图1. Cas9 sgRNA转录原理示意图
2.Target Sense Oligo设计举例
2.1 选取20 bp的Target Sequence,其中方框部分为PAM序列,下划线部分为Target Sequence。

2.2 根据选取的Target Sequence设计Target Sense Oligo,则其序列应为:

其中双下划线为保护碱基,波浪线部分为T7 Promoter序列,下划线部分为Target Sequence反向互补序列,如果Target Sequence反向互补序列第一个字母是G碱基,则可以和T7 Promoter序列共用一个G碱基。下划虚线部分为SpCas9 sgRNA Scaffold部分序列。
2.3 转录得到的Cas9 sgRNA序列应为:

下划线部分为Target Sequence反向互补序列,波浪线部分为SpCas9 sgRNA Scaffold部分序列。
■ 实验流程
1.DNA转录模板制备
Cas9 Antisense Oligo与Target Sense Oligo退火延伸反应完成后便可作为转录模板使用。
1.1 退火延伸体系配制
| 组分 | 体积 |
| 2 × PCR Master Mix | 10 μL |
| Cas9 Antisense Oligo (10μM) | 0.5 μL |
| Target Sense Oligo (10μM) | 0.5 μL |
| Nuclease-free Water | 9 μL |
1.2 PCR退火延伸程序设置
| 温度 | 时间 | 循环数 |
| 95℃ | 2 min | × 1 |
| 95℃ | 15 s | × 5 |
| 55℃ | 15 s | |
| 72℃ | 10 s | |
| 25℃ | Hold on |
2.Cas9 sgRNA体外转录
2.1 按下表试剂的顺序进行反应体系的配制。
| 组分 | 体积 |
| 5 × TranscriptMax Reaction Buffer | 4 μL |
| NTP mix | 8 μL |
| TranscriptMax Enzyme Mix | 2.1 μL |
| Nuclease-free Water | 0.9 μL |
| DNA 转录模板 | 5 μL |
• 请将试剂解冻并完全混匀后再使用。
• 5 × TranscriptMax Reaction Buffer中含有亚精胺,而亚精胺与核酸容易形成复合体沉淀,DNA转录模板尽量最后加入到体系中。
• 上述反应体系的总体积为20 μL,可适当等比例调整反应体系。
2.2 将上述试剂充分混匀,然后短暂离心,在37°C下孵育2-4 h进行体外转录,延长转录时间可提高转录产量。在时间充裕的条件下,推荐过夜转录12-16 h。
2.3 37℃孵育结束后,按照下表配制30 μL的DNase Ⅰ应液加入到20 μL的体外转录产物中,以去除转录体系中的DNA模板。
| 组分 | 体积 |
| 2 × DNase Ⅰ Buffer | 25 μL |
| DNase Ⅰ | 4 μL |
| Nuclease-free Water | 1 μL |
DNase Ⅰ反应条件:37℃,30 min。
3.Cas9 sgRNA转录产物磁珠纯化
3.1 首先将磁珠从4℃冰箱中取出,在室温中放置约30 min,使其温度平衡至室温。颠倒或涡旋振荡使磁珠充分混匀,吸取25 μL磁珠和50 μL异丙醇加入到50 μL待纯化的sgRNA 样品中,用移液器吹打充分混匀。
3.2 室温孵育5 min,使RNA结合到磁珠上。
3.3 将样品置于磁力架上5 min,待溶液澄清后,小心移除上清。
3.4 保持样品置于磁力架上,加入200 μL新鲜配制的80%乙醇,漂洗磁珠,室温孵育30 s,小心移除上清。
注:漂洗时使用的80% (v/v)乙醇需要使用Nuclease-free water新鲜配制,配制方法举例如下:分别量取8 mL无水乙醇和2 mL Nuclease-free water,混匀后可得10 mL 80% (v/v)乙醇。
3.5 重复步骤4,共漂洗2 次。
3.6 保持样品始终处于磁力架上,开盖空气干燥磁珠5 min。
注:磁珠开盖晾干时要避免过分干燥,如果磁珠出现龟裂,则提示磁珠过分干燥,此时RNA的洗脱效率会降低。
3.7 将样品从磁力架上取出,加入50 μL Nuclease-free water,用移液器吹打以充分混匀,室温静置5 min。
3.8 将样品置于磁力架5 min,待溶液澄清后,小心转移上清至一个新的Nuclease-free PCR管中,即得到纯化后的Cas9 sgRNA。
3.9 将纯化后的sgRNA于70℃处理10 min,以灭活残留的DNase I。
■ 注意事项
1. 本试剂盒制备的sgRNA为目前最常用的SpCas9 sgRNA,如果要制备其它类型的Cas9 sgRNA,只需要根据Cas9 sgRNA scaffold序列重新设计Target Sense Oligo 与 Cas9 Antisense Oligo即可。
2. 本试剂盒中的Part B 组分(纯化磁珠,货号:#3620F)单独运输。磁珠保存条件为2-8℃,严禁冻存和高速离心操作。
3. 转录模板的纯度会显著影响体外转录反应。例如模板DNA中混入RNase、EDTA、NaCl等高盐溶液均可显著抑制体外转录反应,导致RNA合成量减少。
4. 实验过程应选用无核酸酶的枪头和离心管。
常见问题解答
Q1:一次可制备多少量的gRNA?
A1:每次反应可获得50-150 μg,延长转录时间至12-16小时可有效提高产量。
Q2:该试剂盒的原理是什么?
A2:利用两条Oligo退火(延伸)形成带T7启动子的双链DNA转录模板(保证T7启动子区域为双链,允许T7 RNA聚合酶识别),之后进行T7转录,接着用DNase Ⅰ消化去除DNA转录模板(否则会被Cas蛋白视作靶标而识别,造成假阳性),最后磁珠纯化获得高纯度gRNA。
Q3:可以用质粒作为转录模板吗?
A3:不建议。因为质粒做转录模板时,转录的终止位置不非常确定(即便有T7终止子的情况下也是如此),会导致转录产物长短不一。而除Cas9的gRNA以外,其他gRNA识别靶标的区域都在RNA的3’端,对于该位置的序列较为敏感,不准确的转录终止位置会影响Cas蛋白的识别。所以如果要用质粒作为转录模板,建议酶切处理使其线性化。
Q4:RNA体外转录从哪个碱基开始?T7启动子残留的碱基是否会对后续实验造成影响?
A4:转录起始于T7启动子5' – TAATACGACTCACTATAG – 3'的最后一个碱基G,转录产物的第一个碱基为G。常见的Cas12a、Cas12b、Cas12f和Cas13a,其gRNA的spacer区均在3' 端,5' 端多一个G没有影响。对于Cas9和Cas13b等gRNA的spacer区在5’端的情况,仅多一个G也没有显著影响,但如果spacer区的第一个碱基也刚好是G,则可以与T7启动子序列共用一个 G 碱基。
Q5:不小心将磁珠放在-20℃了,会有影响吗?
A5:会,所有磁珠都是不可冷冻的,一旦冷冻,就会影响核酸的吸附效率。
Q6:为什么磁珠纯化中用到的80%乙醇需要现配现用?
A6:由于乙醇的挥发性,久置的乙醇溶液可能会出现乙醇浓度降低的情况,有可能导致漂洗过程中将RNA也一并溶解,导致RNA得率降低。
Q7:已知RNA的质量浓度(ng/μL),如何换算成物质的量浓度(μM)?
A7:体外转录纯化好的RNA(仅一种RNA或同一长度的RNA混合物)测得质量浓度后可通过下列公式换算成物质的量浓度:
c=1000×ρ/[(nt×320.4)+18.02]
公式中:
c — 物质的量浓度,单位为(μM),1 μM=1 μmol/L=1 pmol/μL;
ρ — 质量浓度,单位为(ng/μL);
nt — RNA链长度(核糖核苷酸数);
320.4 — RNA链中单磷酸核糖核苷酸(NMP)的相对平均分子量(除去1分子水);
18.02 — 1分子水的分子量。
参考文献
COA查询
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