36113 ToloPrep Gel Extraction and PCR PurificationKit
产品概述
■ 产品简介
本试剂盒适用于从TAE或TBE电泳缓冲液配制的琼脂糖凝胶、PCR反应产物或其他酶促反应物中提取纯化高质量的DNA,回收效率可达80%。该试剂盒采用特殊的吸附膜,能够有选择地吸附核酸分子,去除反应液中的各种蛋白、引物、dNTP等,得到高质量的DNA纯化产物,可直接用于酶切、测序等后续的分子生物学试验。本试剂盒具有以下特点:
1. 适用于高效回收≤10 kb的DNA片段;
2. 单柱可吸附20 μg DNA;
3. 操作简单快速,整个回收过程仅需 15 min。
■ 产品组分
| 组分 | 36113-03, 200次 |
| 纯化套装 ( 吸附柱 + 收集管) | 200 套 |
| Binding Buffer | 2 × 80 mL |
| Wash Solution (concentrate) | 48 mL |
| Elution Buffer | 20 mL |
■ 保存方法及注意事项
本试剂盒在常温 (10-30°C)干燥保存,有效期见包装。
Wash Solution (concentrate)使用前需按瓶身标签说明加入相应体积的无水乙醇,混匀后使用,并在瓶身做好已加入无水乙醇标记,于室温密闭保存!
Binding Buffer中含有刺激性的化合物,操作过程中应穿上实验服,戴好乳胶手套,避免沾染皮肤、眼睛和衣服,防止吸入口鼻。沾染皮肤或眼睛后,请立即用清水或生理盐水冲洗,必要时寻求医生的帮助。
本产品仅供科研使用。
■ 快速操作流程

1. 准备工作
a. 检查Wash Solution (concentrate) 中是否已加入无水乙醇。
b. 80%乙醇配制:用ddH2O或DEPC水配制,现配现用。
c. Binding Buffer在低温下可能产生沉淀, 使用前请检查。如有沉淀, 请于37°C溶解沉淀,冷却至室温后使用。
d. 如做胶回收实验,请将水浴锅调至60°C。
2. A. (胶回收) :用干净的刀片等切胶工具,在紫外灯下从琼脂糖凝胶中切取目标片段。将切下的胶块放入干净的1.5 mL离心管中,称重,每管胶块建议控制在100-200 mg,最多不超过400 mg;根据琼脂糖凝胶浓度不同,每100 mg胶块加入300-500 μL Binding Buffer,60°C水浴5-10 min溶胶。
· 每100 mg的≤1%琼脂糖凝胶加入300 μL Binding Buffer;每100 mg的1%~1.5%琼脂糖凝胶加入400 μL Binding Buffer;每100 mg的>1.5%琼脂糖凝胶加入500 μL Binding Buffer。
· 切胶过程需尽可能多地去掉不含目标DNA的琼脂糖。
· 切胶过程需尽可能快,减少DNA在紫外线中的暴露时间。
· 溶胶过程中每隔1 min手动颠倒混匀一次,观察到胶块完全融化即可,处理时间过长将导致DNA损伤。
B. (PCR产物直接回收) :将PCR产物转移到一个干净的1.5 mL离心管中,加入5倍体积的Binding Buffer (例如,50μL的PCR产物,加入250 μL Binding Buffer) ,混匀;当待回收的DNA片段小于100 bp时,还需额外加入与PCR产物等体积的异丙醇,混匀。
3. 将吸附柱放入收集管中,转移溶液至吸附柱中,12,000 × g离心30 sec。倒掉收集管中液体,再将吸附柱放入同一个收集管中。
· 如果溶液总体积大于750 μL,则每次上柱750 μL,多次上柱。
4. 加入 600 μL Wash Solution,12,000 × g离心30 sec,倒掉收集管中液体,再将吸附柱放入同一个收集管中。
5.加入 600 μL 80%乙醇水溶液,12,000 × g离心3 min,将吸附柱转移到一个新的1.5 mL离心管中,丢弃装有废液的收集管。
· 取出吸附柱时需注意吸附柱底部不能碰到收集管中废液,如果不小心碰到,需要倒掉收集管中废液,将吸附柱再次放回收集管中,空柱12,000 × g离心1 min再小心取出吸附柱,转移到新的1.5 mL离心管
6. 向吸附膜中央加入20-50 μL Elution Buffer, 室温静置2 min后,12,000 × g离心1 min。
保存管中 DNA 溶液。
· Elution Buffer可以用TE或无酶水代替。
· Elution Buffer、TE或无酶水洗脱前预热至60°C,可进一步提高得率
常见问题解答
Q1:PCR 产物回收效率较低或者未回收到目的片段?
A1:a. 胶块溶解不完全,可适当延长水浴的时间并增加颠倒混匀的频率辅助溶解。
b. 胶块体积太大,溶胶困难,可先将胶块切碎,溶胶后分多次上柱离心,回收DNA片段。
c. Wash Solution中未加入正确量的无水乙醇。
d. Agarose抑制DNA与吸附材料的结合。应尽量切除不含目的DNA片段的Agarose胶。
e. 如果纯化的片段长度大于4 kb或者目的片段含量较少,可以将洗脱液再次加入至吸附柱中进行洗脱以提高回收效率。
f. 洗脱液加入位置不正确,洗脱液应加在硅胶膜的中心部位,以完全覆盖硅胶膜的表面,达到最大的洗脱效率。
g. 洗脱液不合适,洗脱缓冲液的pH值对洗脱效率有影响,如果使用水进行洗脱, 请确保其 pH 值>7.0,pH值过低可能导致低洗脱效率。
h. 洗脱时间过短,洗脱时放置5 min可达到较好的洗脱效果,洗脱时将洗脱液预热至60°C后使用,有利于提高洗脱效率。
Q2:回收DNA进行后续酶切反应效率低?
A2:a. 洗脱产物中含有残留的乙醇,可将空柱离心后的吸附柱开盖室温干燥 2-5 min, 有助于残留的酒精挥发完全。
b. 盐分的残留,可以增加一次80%乙醇水溶液洗涤,沿管壁加入有助于彻底去除管壁上盐分。
c. 琼脂糖质量差,请选用高质量的琼脂糖。
Q3:回收的片段为什么电泳上样会漂起来?
A3:a. 残留的乙醇混入了回收产物中,洗涤时如果吸附柱接触了废液,需再次离心1 min。
b. 配制琼脂糖凝胶的电泳缓冲液浓度过高或陈旧,应重新配制缓冲液。
Q4:洗脱液的选择?
A4:洗脱液可以根据后续实验的需要来确定,一般情况下,若需要进行测序反应,请用无酶水洗脱,如果需要长期保存DNA,请用TE洗脱。
参考文献
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