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31905 High-yield Cas13a crRNA Synthesis and Purification Kit

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31905 High-yield Cas13a crRNA Synthesis and Purification Kit

  • 规 格:
    • 50 T
    • 25 T

货 号:

31905


价 格:

¥ 2300

¥ 1840


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产品概述

■ 产品描述

High-yield Cas13a crRNA Synthesis and Purification Kit是基于T7 RNA聚合酶的体外RNA转录试剂盒,可高效进行Cas13a crRNA的制备。使用本试剂盒时,仅需按照本试剂盒说明书设计并合成Target Antisense Oligo,每次反应可获得50-150 μg的Cas13a crRNA。

 

■ 产品组分

Part A:体外转录试剂(-20℃保存) 31905-01 (25 T) 31905-02 (50 T)
 5 × TranscriptMax Reaction Buffer 100 μL 200 μL
 NTP mix 200 μL 400 μL
 TranscriptMax Enzyme Mix 55 μL 110 μL
 Nuclease-free Water 1 mL 1 mL
 2 × PCR Master Mix 250 μL 500 μL
 Cas13a Sense Oligo 25 μL 25 μL
 Cas13a Control Target Antisense Oligo a 25 μL 25 μL
 2 × DNase Ⅰ Buffer 625 μL 1250 μL
 DNase Ⅰ 100 μL 200 μL
Part B:纯化磁珠(4℃保存) 3620F-01 (25 T) 3620F-01 (25 T)
 Magnetic Beads b 625 μL 1250 μL

a. Cas13a Control Target Antisense Oligo 是阳性对照,可与 Cas13a Sense Oligo 退火延伸后,作为转录模板使用,用来测试体外转录体系的反应效率。在 37°C孵育 30 min 条件下,对照转录反应体系生成的 crRNA 产量≥50 μg,其产量在纯化后由 NanoDrop 测定。在变性条件下进行 TBE-Urea gel 电泳,可观察到 crRNA 单条带大小约为 65 nt。

b. 本产品中 Part B 组分(纯化磁珠,#3620F)与 Part A 组分保存条件不同,因此 Part B 组分需单独运输!

 

■ 保存条件

Part A组分-20℃储存;Part B组分2~8℃储存(磁珠严禁冷冻!)。

 

■ 需自备的实验物品

• PCR仪

• 无水乙醇

• 异丙醇

• 无核酸酶水

• 96 孔磁力架(推荐TOLOBIO 96孔磁力架,货号:#49002)

• 96 孔板或 PCR 8 联排管

• 移液器及吸头

 

■ Cas13a crRNA 转录引物设计

1.Cas13a crRNA 转录原理示意图

Cas13a crRNA 转录原理示意图如图 1 所示,试剂盒中已提供 Cas13a Sense Oligo,只需根据待测目标序列设计 Target Antisense Oligo。

 

 

图1. Cas13a crRNA转录原理示意图

 

2.Target Antisense Oligo 设计举例

2.1 选取 28 nt 的 Target Sequence,下划线部分为 Target Sequence。

 

2.2 根据选取的 Target Sequence 设计 Target Antisense Oligo,则其序列应为:

其中波浪线部分为Cas13a DR 部分反向互补序列,为固定序列。下划线部分为 Target Sequence。

 

2.3 转录得到的 Cas13a crRNA 序列应为:

波浪线部分为 LwaCas13a crRNA DR 序列,下划线部分为 Target Sequence 反向互补序列。

 

■ 实验流程

1.DNA 转录模板制备

Cas13a Sense Oligo与Target Antisense Oligo退火延伸反应完成后便可作为转录模板使用。

1.1 退火延伸体系配制

组分 体积
2 × PCR Master Mix 10 μL
Cas13a Sense Oligo (10μM) 0.5 μL
Target Antisense Oligo (10μM) 0.5 μL
Nuclease-free Water 9 μL

1.2 PCR 退火延伸程序设置

温度 时间 循环数
95℃ 2 min × 1
95℃ 15 s × 5
55℃ 15 s
72℃ 10 s
25℃ Hold on  

 

2. Cas13a crRNA体外转录

2.1 按下表试剂的顺序进行反应体系的配制。

组分 体积
5 × TranscriptMax Reaction Buffer 4 μL
NTP mix 8 μL
TranscriptMax Enzyme Mix 2.1 μL
Nuclease-free Water  0.9 μL
DNA 转录模板 5 μL

• 请将试剂解冻并完全混匀后再使用。

• 5 × TranscriptMax Reaction Buffer 中含有亚精胺,而亚精胺与核酸容易形成复合体沉淀,DNA 转录模板尽量最后加入到体系中。

• 上述反应体系的总体积为 20 μL,可适当等比例调整反应体系。

2.2 将上述试剂充分混匀,然后短暂离心,在37℃下孵育2-4 h进行体外转录即可获得crRNA产物。延长转录时间(如过夜转录12-16 h)可提高crRNA产量。

2.3 37℃孵育结束后,按照下表配制30 μL的DNase 反应液加入到20 μL的体外转录产物中,以去除转录体系中的DNA模板。

组分 体积
2 × DNase Ⅰ Buffer 25 μL
DNase Ⅰ 4 μL
Nuclease-free Water 1 μL

DNase Ⅰ反应条件:37℃,30 min。

 

3.Cas13a crRNA 转录产物磁珠纯化

3.1 首先将磁珠从 4℃冰箱中取出,在室温中放置约 30 min,使其温度平衡至室温。颠倒或涡旋振荡使磁珠充分混匀,吸取 25 μL 磁珠和 50 μL 异丙醇加入到 50 μL 待纯化的 crRNA 样品中,用移液器吹打充分混匀。

3.2 室温孵育 5 min,使 RNA 结合到磁珠上。

3.3 将样品置于磁力架上 5 min,待溶液澄清后,小心移除上清。

3.4 保持样品置于磁力架上,加入 200 μL 新鲜配制的 80%乙醇,漂洗磁珠,室温孵育 30 s,小心移除上清。

注:漂洗时使用的 80% (v/v)乙醇需要使用 Nuclease-free water 新鲜配制,配制方法举例如下:分别量取8 mL 无水乙醇和 2 mL Nuclease-free water,混匀后可得 10 mL 80% (v/v)乙醇。

3.5 重复步骤 4,共漂洗 2 次。

3.6 保持样品始终处于磁力架上,开盖空气干燥磁珠 5 min。

注:磁珠开盖晾干时要避免过分干燥,如果磁珠出现龟裂,则提示磁珠过分干燥,此时 RNA 的洗脱效率会降低。

3.7 将样品从磁力架上取出,加入 50 μL Nuclease-free water,用移液器吹打以充分混匀,室温静置 5 min。

3.8 将样品置于磁力架 5 min,待溶液澄清后,小心转移上清至一个新的 Nuclease-free PCR 管中,即得到纯化后的 Cas13a crRNA。

3.9 将纯化后的crRNA于70℃处理10 min,以灭活残留的DNase I。

常见问题解答

Q1:一次可制备多少量的gRNA?

A1:每次反应可获得50-150 μg,延长转录时间至12-16小时可有效提高产量。

 

Q2:该试剂盒的原理是什么?

A2:利用两条Oligo退火(延伸)形成带T7启动子的双链DNA转录模板(保证T7启动子区域为双链,允许T7 RNA聚合酶识别),之后进行T7转录,接着用DNase Ⅰ消化去除DNA转录模板(否则会被Cas蛋白视作靶标而识别,造成假阳性),最后磁珠纯化获得高纯度gRNA。

 

Q3:可以用质粒作为转录模板吗?

A3:不建议。因为质粒做转录模板时,转录的终止位置不非常确定(即便有T7终止子的情况下也是如此),会导致转录产物长短不一。而除Cas9的gRNA以外,其他gRNA识别靶标的区域都在RNA的3’端,对于该位置的序列较为敏感,不准确的转录终止位置会影响Cas蛋白的识别。所以如果要用质粒作为转录模板,建议酶切处理使其线性化。

 

Q4:RNA体外转录从哪个碱基开始?T7启动子残留的碱基是否会对后续实验造成影响?

A4:转录起始于T7启动子5' – TAATACGACTCACTATAG – 3'的最后一个碱基G,转录产物的第一个碱基为G。常见的Cas12a、Cas12b、Cas12f和Cas13a,其gRNA的spacer区均在3'  端,5' 端多一个G没有影响。对于Cas9和Cas13b等gRNA的spacer区在5’端的情况,仅多一个G也没有显著影响,但如果spacer区的第一个碱基也刚好是G,则可以与T7启动子序列共用一个 G 碱基。

 

Q5:不小心将磁珠放在-20℃了,会有影响吗?

A5:会,所有磁珠都是不可冷冻的,一旦冷冻,就会影响核酸的吸附效率。

 

Q6:为什么磁珠纯化中用到的80%乙醇需要现配现用?

A6:由于乙醇的挥发性,久置的乙醇溶液可能会出现乙醇浓度降低的情况,有可能导致漂洗过程中将RNA也一并溶解,导致RNA得率降低。

 

Q7:已知RNA的质量浓度(ng/μL),如何换算成物质的量浓度(μM)?

A7:体外转录纯化好的RNA(仅一种RNA或同一长度的RNA混合物)测得质量浓度后可通过下列公式换算成物质的量浓度:

c=1000×ρ/[(nt×320.4)+18.02]

公式中:

c — 物质的量浓度,单位为(μM),1 μM=1 μmol/L=1 pmol/μL;

ρ — 质量浓度,单位为(ng/μL);

nt — RNA链长度(核糖核苷酸数);

320.4 — RNA链中单磷酸核糖核苷酸(NMP)的相对平均分子量(除去1分子水);

18.02 — 1分子水的分子量。

产品说明书

31905 High-yield Cas13a crRNA Synthesis and Purification Kit Manual

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参考文献

COA查询

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