CRISPR基因组编辑原理
2023-02-15
CRISPR小知识:CRISPR基因组编辑原理
前两期内容,小编在公众号里简单介绍了CRISPR的发现历史、CRISPR免疫机理和分类,接下来我们重点介绍CRISPR的技术应用。
由于目前基于CRISPR的应用绝大多数利用了Cas9蛋白,因此先以Cas9为例,说明基因组编辑这一原理。
Cas9完成识别和切割有3个成员参与了这一过程,包括被切割的双链DNA,起引导作用的sgRNA和切开双链作用的Cas9蛋白1-4。第一个成员双链DNA中必须含有PAM(protospacer-adjacent motif)序列,这段短的序列紧挨着sgRNA识别序列,对Cas9的结合与有效切割起到重要作用。比如,最常用的SpCas9(Streptococcus pyogenes)的PAM是NGG5。第二个成员sgRNA实际上是人工改造过的RNA。在天然状态下,引导Cas9切割的guide RNA是由crRNA和tracrRNA组成,而sgRNA是将这两个RNA通过一段接头连成了一个RNA(single guide RNA),同样具有活性功能5。sgRNA可分为3个部分:第一个部分是20 nt左右的序列与靶标DNA互补配对;第二个部分是repeat-antirepeat序列,这段序列本身是tracrRNA互补结合crRNA的部分,同时一部分也对Cas9的活性发挥作用;第三个部分是3个loop3结构,这段序列使sgRNA与Cas9的结合非常关键。虽然有研究发现去掉第三个loop在体外也能很好的发挥活性5,但有些研究显示完整的sgRNA在体内的活性更高6。
Cas9蛋白以及DNA和sgRNA组成的复合体已解析了晶体结构1, 7。从整体看,由内切酶部分(NUC)和α-螺旋识别部分(REC)。其中,NUC部分包含HNH内切酶结构域、RuvC-like内切酶结构域、PAM相互作用结构域(PI)和一个进化上趋异的楔形结构域(WED)。RuvC和NHN结构域分别切割双链DNA的其中一条链;PI结构域与DNA上的PAM序列通过碱基的相互作用,对Cas9的特异性起到非常重要的作用。WED结构域识别sgRNA骨架,不同来源的Cas9的WED差异大,同时它与PAM序列的骨架也有相互作用。螺旋REC部分不同的Cas9差异较大,它包含负责识别gRNA和靶标DNA杂合体的区域,同时也特异性识别sgRNA的骨架。另外,生化实验和结构研究也表明,Cas9作用于DNA并切割的过程中,Cas9的构象会发生一系列的变化。
Cas9介导的基因组编辑需要两个步骤:DNA的切割和DNA的修复。sgRNA引导Cas9与特定的DNA结合,并切割靶标DNA从而引起双链DNA的断裂(DSB)8。双链断裂后,会引发体内两套修复系统的修复,一种是错误倾向的非同源末端连接修复(NHEJ),另一种是精确的同源重组修复(HR)。NHEJ修复方式存在于真核细胞中,少数原核细胞有不同于真核的较简单的NHEJ。NHEJ会在双链断裂的位置附近引起随机的插入或缺失突变,从而会导致基因的失活(例如引起移码突变或关键位置编码蛋白的变化)。因此,HR的修复需要加入一段供体DNA作为模板,通过同源重组原理,进行精确的修复。这种修复方式可以进行基因的敲出、突变、插入或者基因的修正。
2013年,通过生物信息学的分析发现,存在另外一种class 2类型的CRISPR系统;这种假定的type V的系统包含一个约1300个氨基酸的大蛋白,被称为Cpf19,后改称为Cas12a10。2015年,张锋实验室研究发现,Cas12a与Cas9一样都是RNA介导的DNA内切酶,但在许多特性上又不同于Cas9蛋白。首先,Cas12a只需要crRNA即可引导切割,而不需要tracrRNA;它识别的PAM是富含T的序列。另外,Cas12a切割双链DNA后,留下一个5’突出的粘性末端。张锋实验室测试了16个Cas12a家族的蛋白,鉴定了来源于氨基酸球菌属(Acidaminococcus)和毛螺菌属(Lachnospiraceae)的两个Cas12a能在人类细胞中发挥切割活性11。
2016到2017年,陆续有6篇文章解析了Cas12a的蛋白晶体结构,发现了Cas9和Cas12a的几点相似与不同之处12-18。从整体结构来看,Cas12a和Cas9是相似的,同样含有两个裂片(lobe),之间含桥接螺旋序列,以及在两裂片间存在一个中心通道,负责结合crRNA-靶标DNA复合体。虽然两个蛋白的整体结构是相似的,但是从同源性上来看,仅仅RuvC核酸酶结构域存在一定同源性,其余的序列上并没有相似性。其中一个重要的区别是Cas9负责切割的是HNH和RuvC结构域,分别负责切割靶标链(T链)和非靶标链(NT链)。Cas12a由于缺少HNH结构域,取而代之的是Nuc结构域,而且这个结构域与已知的所有蛋白都没有相似结构。起初,研究者认为Cas12a的Nuc和RuvC分别切割双链中的一条链17,但越来越多的证据表明其RuvC和Nuc的部分氨基酸组成了RuvC的催化口袋,靶标DNA的两条链都是由该口袋完成切割15, 16, 18, 19。另外,Emmanuelle等人发现了Cas12a具有切割RNA的特性,它能够将前体crRNA的5’端切割加工,形成成熟的crRNA20。
2015年,同样属于class 2 type V家族的Cas12b(旧称C2c1)被证明拥有切割活性。Cas12b与Cas12a在结构上非常相似,且活性结构域和催化机理可能也是相似的,但Cas12b需要crRNA和tracrRNA19, 21, 22。2016年,Cas13a(旧称C2c2)被证明是靶向RNA的核酸酶,属于class 2 type VI,它与Cas9和Cas12a差异较大,且行使切割功能的是HEPN结构域23。
参考文献:
1 Nishimasu H, Ran FA, Hsu PD et al. Crystal structure of Cas9 in complex with guide RNA and target DNA. Cell 2014; 156:935-949.
2 Nishimasu H, Cong L, Yan WX et al. Crystal Structure of Staphylococcus aureus Cas9. Cell 2015; 162:1113-1126.
3 Jiang F, Zhou K, Ma L, Gressel S, Doudna JA. STRUCTURAL BIOLOGY. A Cas9-guide RNA complex preorganized for target DNA recognition. Science 2015; 348:1477-1481.
4 Mulepati S, Heroux A, Bailey S. Structural biology. Crystal structure of a CRISPR RNA-guided surveillance complex bound to a ssDNA target. Science 2014; 345:1479-1484.
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6 Dang Y, Jia G, Choi J et al. Optimizing sgRNA structure to improve CRISPR-Cas9 knockout efficiency. Genome Biol 2015; 16:280.
7 Anders C, Niewoehner O, Duerst A, Jinek M. Structural basis of PAM-dependent target DNA recognition by the Cas9 endonuclease. Nature 2014; 513:569-573.
8 Hsu PD, Lander ES, Zhang F. Development and applications of CRISPR-Cas9 for genome engineering. Cell 2014; 157:1262-1278.
9 Schunder E, Rydzewski K, Grunow R, Heuner K. First indication for a functional CRISPR/Cas system in Francisella tularensis. Int J Med Microbiol 2013; 303:51-60.
10 Shmakov S, Smargon A, Scott D et al. Diversity and evolution of class 2 CRISPR-Cas systems. Nat Rev Microbiol 2017; 15:169-182.
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12 Dong D, Ren K, Qiu X et al. The crystal structure of Cpf1 in complex with CRISPR RNA. Nature 2016; 532:522-526.
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14 Nishimasu H, Yamano T, Gao L, Zhang F, Ishitani R, Nureki O. Structural Basis for the Altered PAM Recognition by Engineered CRISPR-Cpf1. Mol Cell 2017.
15 Stella S, Alcon P, Montoya G. Structure of the Cpf1 endonuclease R-loop complex after target DNA cleavage. Nature 2017.
16 Swarts DC, van der Oost J, Jinek M. Structural Basis for Guide RNA Processing and Seed-Dependent DNA Targeting by CRISPR-Cas12a. Mol Cell 2017; 66:221-233.e224.
17 Yamano T, Nishimasu H, Zetsche B et al. Crystal Structure of Cpf1 in Complex with Guide RNA and Target DNA. Cell 2016; 165:949-962.
18 Yamano T, Zetsche B, Ishitani R, Zhang F, Nishimasu H, Nureki O. Structural Basis for the Canonical and Non-canonical PAM Recognition by CRISPR-Cpf1. Mol Cell 2017; 67:633-645.e633.
19 Yang H, Gao P, Rajashankar KR, Patel DJ. PAM-Dependent Target DNA Recognition and Cleavage by C2c1 CRISPR-Cas Endonuclease. Cell 2016; 167:1814-1828.e1812.
20 Fonfara I, Richter H, Bratovic M, Le Rhun A, Charpentier E. The CRISPR-associated DNA-cleaving enzyme Cpf1 also processes precursor CRISPR RNA. Nature 2016; 532:517-521.
21 Shmakov S, Abudayyeh Omar O, Makarova Kira S et al. Discovery and Functional Characterization of Diverse Class 2 CRISPR-Cas Systems. Molecular Cell 2015; 60:385-397.
22 Liu L, Chen P, Wang M et al. C2c1-sgRNA Complex Structure Reveals RNA-Guided DNA Cleavage Mechanism. Mol Cell 2017; 65:310-322.
23 Abudayyeh OO, Gootenberg JS, Konermann S et al. C2c2 is a single-component programmable RNA-guided RNA-targeting CRISPR effector. Science 2016; 353:aaf5573.